Fièvre au retour d'un pays tropical

Infectiologie · Symptôme ou situation · mise à jour le 09/11/2026

Fréquence : Le paludisme cause 22 % des fièvres au retour de voyage ; les infections tropicales 36 %, les infections cosmopolites 36 % ^[1]

Bilan le jour même (paludisme à éliminer en urgence)

Toute fièvre dans les mois qui suivent le retour d'une zone d'endémie palustre impose de rechercher un paludisme en urgence, quels que soient les symptômes associés, même sous chimioprophylaxie, et même si un autre foyer ou une dengue est identifié ; une simple « sensation de fièvre » suffit ^[2]. Le prélèvement se fait dès que possible, accompagné du pays de séjour, de la date de retour et des traitements antipaludiques ^[2]. Délai maximal de 4 heures entre le prélèvement et le rendu du résultat, avec un résultat rendu dans les 2 heures suivant la réception du prélèvement ; le laboratoire appelle directement le clinicien si c'est positif ^[2].

Orientation biologique : la thrombopénie (< 150 G/L) est l'anomalie la plus fréquente du paludisme et sa valeur prédictive positive est élevée ; avec une anémie hémolytique modérée et une hyperbilirubinémie libre, elle oriente ; l'absence d'hyperleucocytose aussi ; la CRP élevée aide à distinguer le paludisme des arboviroses ^[2]. Le bilan de base associe NFS, fonctions rénale et hépatique, hémocultures, frottis et test VIH ; bandelette et culture urinaires selon le cas ^[1]. Une fièvre au retour peut aussi être une infection banale (infection urinaire, pneumopathie) ^[1].

Hospitaliser si un seul critère de traitement ambulatoire manque ^[2] : signe de gravité (troubles de la conscience, convulsions, choc, détresse respiratoire, saignement, ictère ou bilirubine > 50 µmol/L, hémoglobine < 7 g/dL, créatininémie > 265 µmol/L, glycémie < 2,2 mmol/L, parasitémie > 4 %, hyperlactatémie ou acidose) ; vomissements ou diarrhée abondante ; parasitémie ≥ 2 % ; plaquettes ≤ 50 G/L, hémoglobine ≤ 10 g/dL ou créatininémie ≥ 150 µmol/L ; terrain à risque (âge avancé, comorbidité dont cardiopathie, splénectomie, grossesse, immunodépression), isolement, éloignement d'un hôpital ; impossibilité d'un suivi à J3, J7 et J28 ; échec d'un premier traitement ; diagnostic parasitologique non fiable ou non rapide ; doute sur l'observance ou la compréhension du traitement. Le traitement ambulatoire suppose une première prise supervisée (urgences ou consultation de médecine tropicale) suivie de 2 heures d'observation ^[2]. Si le paludisme est confirmé, rechercher les signes biologiques de gravité, dont la parasitémie ^[2]. Chez l'enfant, une hospitalisation initiale est le plus souvent recommandée ^[2].

Fièvre avec éosinophilie : voir la fiche « Hyperéosinophilie » ; diarrhée : fiche « Diarrhée aiguë » ; femme enceinte : fiche « Fièvre et grossesse ».

Ailleurs dans le monde : le Royaume-Uni et une revue américaine de médecine de famille répètent les lames jusqu'à trois prélèvements négatifs, sur 24 à 48 heures au Royaume-Uni, à 12 heures d'intervalle aux États-Unis ^[4,5], là où la SPILF prévoit une réitération à 12-24 heures ^[2] ; les Pays-Bas répètent les tests si la suspicion reste forte, en notant qu'aucune donnée claire n'appuie le chiffre de trois ^[6] (avis d'experts). Le TDR reste un complément du frottis et de la goutte épaisse au Royaume-Uni et aux États-Unis ^[4,5], quand la SPILF admet l'association frottis mince et TDR à défaut de goutte épaisse ^[2] (expertise microscopique inégale selon les laboratoires). Aux Pays-Bas, le test de dépistage doit être fait dans les 90 minutes, jour et nuit, puis confirmé au microscope ^[6], et le Royaume-Uni vise un appel au prescripteur dans les 4 heures suivant l'arrivée au laboratoire ^[4], pour un résultat français attendu dans les 2 heures après réception ^[2] (organisation des laboratoires). Le bilan de base britannique est celui de la fiche (NFS, fonctions rénale et hépatique, hémocultures, lames, VIH) ^[1]. Les Pays-Bas écartent eux aussi la sérologie du diagnostic de l'accès ^[6].

Dengue, chikungunya, Zika : selon la zone et le jour des symptômes

Règle des délais (dengue et chikungunya) : du 1er au 7e jour des signes, RT-PCR ; entre J5 et J7, RT-PCR et sérologie ; au-delà de J7, sérologie seule ; l'antigène NS1 de la dengue ne remplace la RT-PCR qu'en épidémie avérée, pour une forme simple, du 1er au 5e jour ^[3]. Zika : RT-PCR sang ou urines jusqu'à J7, urines seules de J7 à J10, sérologie à partir de J5 ^[3].

Prise en charge : ces examens ne sont remboursés que devant des signes évocateurs au retour d'une zone touchée (ou dans une zone d'activité du vecteur) ^[3]. Une dengue n'exclut pas un paludisme associé : la recherche de paludisme reste obligatoire ^[2].

La dengue (incubation de 4 à 8 jours) fait partie des fièvres indifférenciées de moins de 14 jours d'incubation, avec le paludisme, les salmonelloses et la primo-infection par le VIH ^[1].

Ailleurs dans le monde : les CDC (2019) demandent aussi une RT-PCR dans les 7 premiers jours, puis des IgM si elle est négative ou au-delà de 7 jours, et admettent que le laboratoire fasse d'emblée PCR et IgM, ou l'antigène NS1 à la place de la PCR ^[7], là où la NABM réserve le NS1 à l'indisponibilité de la PCR en épidémie, pour une forme simple ^[3] (accès aux tests et remboursement). Les Pays-Bas rapprochent le NS1 de la PCR pendant les 7 premiers jours, avec une sensibilité un peu moindre qui baisse vite ^[8]. Au Royaume-Uni, le laboratoire de référence réalise un panel de PCR et de sérologies selon la géographie du voyage, Zika compris, pour tout voyageur fébrile dont la demande détaille les symptômes et le séjour ^[9], alors qu'en France le prescripteur choisit les actes selon la zone et le jour des signes ^[3] (organisation des laboratoires). L'OMS (2025) retient la même logique que la NABM : détection directe la première semaine, anticorps à partir de la fin de la première semaine ^[10].

Examens orientés par l'exposition et la clinique

L'interrogatoire guide les examens : qui (terrain, immunodépression, visite à la famille), où (pays, zone rurale ou urbaine, sur 12 mois), quoi (piqûres, contact animal, eau douce, rapports sexuels, soins à l'étranger), quand (incubation : moins de 14 jours, 14 jours à 6 semaines, plus de 6 semaines) ^[1].

• moins de 14 jours : paludisme, dengue, salmonelloses, typhoïde (hémocultures, coproculture), primo-infection VIH, grippe, légionellose, fièvre Q ^[1] ;
• 14 jours à 6 semaines : paludisme, typhoïde, hépatites A et E, bilharziose aiguë, abcès amibien du foie (échographie, sérologie) ^[1] ;
• plus de 6 semaines : tuberculose, hépatite B, leishmaniose viscérale ^[1].

Le paludisme a une incubation de 6 jours au moins, comptés depuis l'arrivée en zone d'endémie, et peut survenir jusqu'à plusieurs années après le séjour ^[1,2]. Eau douce, rongeurs : voir aussi la fiche « Zoonoses et leptospirose ». Hospitalisation à l'étranger : penser aux bactéries multirésistantes (dépistage si hospitalisation) ^[1].

Ailleurs dans le monde : pas de discordance notable sur les examens : la revue britannique, adaptée de la recommandation de la British Infection Association, part aussi de l'exposition et de l'incubation ^[1], et les recommandations britanniques sur le paludisme évoquent les mêmes diagnostics (typhoïde, hépatites, arboviroses, VIH) ^[4]. Le Royaume-Uni fait précéder le bilan d'une évaluation du risque de fièvre hémorragique virale, pour un patient fébrile dont les symptômes ont débuté dans les 21 jours suivant le départ d'un pays d'endémie, avec isolement et recherche urgente de paludisme si le risque est retenu ^[12] (organisation du risque biologique).

Paludisme traité en ambulatoire : suivi

Surveillance clinique et biologique avec frottis-goutte épaisse à J3 (parasitémie inférieure à 25 % de la valeur initiale), J7 (parasitémie négative) et J28 ^[2]. Le contrôle quotidien de la parasitémie n'a pas d'intérêt dans les formes simples d'évolution favorable ; des gamétocytes après traitement ne justifient pas une seconde cure ^[2]. Après un traitement par artésunate intraveineux (accès grave), une hémolyse retardée survient chez 15 % des patients, à la 2e ou 3e semaine : rechercher chaque semaine, à J7, J14, J21 et J28, des signes cliniques d'anémie et des signes biologiques d'hémolyse (hémoglobine, LDH, haptoglobine) ^[2]. Pas de reprise de la chimioprophylaxie après un traitement curatif complet, sauf nouveau séjour ^[2].

Le TDR n'a pas d'utilité dans le suivi thérapeutique ; le frottis au microscope, si ^[3].

Ailleurs dans le monde : le Royaume-Uni contrôle la lame et la NFS une fois, environ 14 jours après le traitement, surtout après un accès grave ou une artémisinine, en reconnaissant l'absence d'étude systématique sur ce suivi ^[4] ; une revue américaine recherche une anémie hémolytique dans les 30 jours après un accès grave ^[5]. La SPILF prévoit des lames à J3, J7 et J28 et, après artésunate intraveineux, un contrôle hebdomadaire de l'hémolyse ^[2], un suivi plus rapproché qui accompagne le traitement ambulatoire ; le Royaume-Uni réserve ce traitement ambulatoire d'un accès à P. falciparum à des unités expérimentées dotées de protocoles ^[4] (avis d'experts, autre organisation des soins). Le Royaume-Uni, les États-Unis et l'Allemagne dosent la G6PD avant la primaquine ^[4,5,13], comme la SPILF ^[2], d'où l'option.

Sources

1. Davidson H, Houston A. Fever in the returning traveller. Medicine (Abingdon). 2021;49(11):723-726.
2. Société de pathologie infectieuse de langue française (SPILF) et sociétés associées. Prise en charge et prévention du paludisme d’importation. Mise à jour 2017 des recommandations pour la pratique clinique de 2007 (texte long).
3. Caisse nationale de l’assurance maladie. Nomenclature des actes de biologie médicale (NABM), version 105 : actes 1125 et 4364 (paludisme), 4354 (sérologie palustre), 5259 à 5267, 4273, 1254 et 1255 (dengue, chikungunya, Zika).
4. Lalloo DG, Shingadia D, Bell DJ, Beeching NJ, Whitty CJM, Chiodini PL ; PHE Advisory Committee on Malaria Prevention in UK Travellers. UK malaria treatment guidelines 2016. J Infect. 2016;72(6):635-649.
5. Shahbodaghi SD, Rathjen NA. Malaria: Prevention, Diagnosis, and Treatment. Am Fam Physician. 2022;106(3):270-278.
6. Rijksinstituut voor Volksgezondheid en Milieu (RIVM, Pays-Bas), LCI. Richtlijn Malaria. Établie le 19 mai 2026 ; chapitre diagnostic établi le 22 janvier 2025.
7. Sharp TM, Fischer M, Muñoz-Jordán JL, et al. Dengue and Zika Virus Diagnostic Testing for Patients with a Clinically Compatible Illness and Risk for Infection with Both Viruses. MMWR Recomm Rep. 2019;68(1):1-10.
8. Rijksinstituut voor Volksgezondheid en Milieu (RIVM, Pays-Bas), LCI. Richtlijn Dengue. Établie le 20 mai 2025 ; chapitre diagnostic révisé le 8 juillet 2026.
9. UK Health Security Agency. Zika virus: sample testing advice. Mise à jour du 5 août 2026.
10. Organisation mondiale de la santé. WHO guidelines for clinical management of arboviral diseases: dengue, chikungunya, Zika and yellow fever. Genève : OMS ; 2025 : section 2.6, Laboratory confirmation.
11. Jauréguiberry S, Paris L, Caumes E. Acute schistosomiasis, a diagnostic and therapeutic challenge. Clin Microbiol Infect. 2010;16(3):225-231.
12. Advisory Committee on Dangerous Pathogens (ACDP), Royaume-Uni. Viral haemorrhagic fevers risk assessment, algorithme, septembre 2026 ; page mise à jour le 9 septembre 2026.
13. Robert Koch-Institut (Allemagne). RKI-Ratgeber Malaria. Version révisée d'octobre 2026 (Epidemiologisches Bulletin 44/2026).